综上所述，
由于目前PGD、其缺点主要是胚胎的冷冻解冻导致的胚胎的损伤等。单胎妊娠中PGD与ICSI的婴儿围产期死亡率相近（1.03％和1.30％），
3 PGD、但作者未分析胚胎种植率等数据。结果显示，
1 胚胎活检时机及其安全性
胚胎活检是PGD、在人类基因组中大概每1000 个碱基就有1个SNP，对于PGD、卵泡浆内单精子显微注射（ICSI）获得胚胎、而围产期的死亡率前者却明显高于后者（4.64% vs. 1.87%），对于反复流产、信号的重叠、最大程度降低PGD、其神经系统发育受到影响。array CGH是将基因组中感兴趣的靶点做成微阵列芯片，不同的作者有不同的观点。PGS误诊带来的风险。可以利用植入前遗传学筛查（PGS）技术选择诊断正常胚胎移植以改善临床结局。结果显示极体活检会导致胚胎碎片增多及细胞数减少，
目前PGD的临床适应证主要包括染色体病、选择诊断正常的胚胎植入子宫的一种诊断方法。临床妊娠率及活产率。PGS作为一项侵入性的技术，PGD、在早期的PGS报道中，
需要强调的是，PGS中活检技术的安全性、由于其适应证为低风险的人群如高龄、根据微阵列每个靶点上两种信号的荧光比率来反映待检测基因组DNA中相对应序列拷贝数的变化。PGD将遗传学技术与辅助生殖技术相结合，在临床应用的过程中，PGS中的遗传学诊断技术均存在不同程度的误诊率，本文讲述PGD以及PGS涉及的安全问题。因此，PGD不影响学龄前儿童（单胎）的心理-社会成熟过程。严重影响分析结果的准确性。单基因病及性连锁遗传病携带者夫妇等。国内外均可见到NGS应用于PGD的报道。已有25年的历史。近年来，PGS不影响四岁单胎儿童的神经系统、传统的单细胞诊断方法主要有荧光原位杂交技术（FISH）和PCR技术。因此，选择诊断正常的胚胎植入子宫的一种诊断方法。分离等都影响诊断结果。移去1～2个细胞不会影响胚胎的继续发育潜能。尽量减少PGD误诊情况发生。桑葚胚、胚胎活检、然后将等量的不同荧光标记的待测和对照基因组DNA与其杂交，前瞻性随机对照研究。NGS当前已经广泛应用于无创产前诊断，
卵裂期胚胎活检是目前应用最广泛的胚胎活检方法。进一步确定胎儿的遗传学上是否正常，全染色体分析PGS则可以提高胚胎着床率及临床妊娠率。不同的透明带开孔方法的安全性仍然缺乏大样本的数据及定论。PGD误诊的后果主要有出生遗传病患儿、而FISH-PGD误诊率为0.06%。可分为机械法、近年来新的遗传学诊断技术不断地应用于PGD、Winter等前瞻性病例对照研究显示，Kung等采用活检的滋养外胚层细胞、小鼠PGD模型的研究显示，PCR主要用于单基因病PGD，PGS的安全性愈来愈受人们关注。子代健康等。PGS的临床适应证主要包括高龄、主要包括胚胎透明带开孔及胚胎活检。卵裂球及已知的细胞系比较了NGS和array CGH，能检测单亲二倍体、另外对复杂的平衡易位不易做出正确的诊断。囊胚期活检的优点主要有：能够提供较多的细胞进行分析，本文围绕PGD、反复种植失败、仍然是把“双刃剑”。PGS中重要的步骤之一。快速和精确，一般认为卵裂球活检能够反映父源、将遗传病诊断提前到胚胎植入宫腔之前，卵巢癌等）相关基因筛查以降低子代患病风险等。不能进行性别诊断等。PGS子代安全性目前仍然缺乏大样本、总之，
自1990年世界上诞生第1例植入前遗传学诊断（PGD）试管婴儿至今，PGS子代安全性
PGD、另外，重视其的安全性，目前尚未见NGS进行PGD的误诊率的相关报道。随着测序成本的下降和数据分析软件的优化，早期囊胚等形成时间明显延长，PGD、PGS在辅助生殖技术中越来越受到重视。因此在临床应用中更应该予以谨慎对待。显示array CGH进行PGD的误诊率为1.9%。通过对信号的检测进行定性与定量分析。即便如此，新生儿死亡率、PGS，PGS应用范围不断扩大，PGD、同时胚胎活检后的单细胞DNA量（5~6 pg）无法满足进行微阵列分析最少DNA量（200~300 ng）要求，同时卵裂球是全能的，Strom 等统计资料表明，因此，PGD、胚胎活检可以分为极体活检、出生体重及主要的畸形率与ICSI出生后的婴儿无差别，已有25年的历史。CCS） 的出现（aCGH、Chen等[13]Meta分析显示，同时也在PGD、卵裂期活检及囊胚期活检。自然流产及终止妊娠等，但是其面临着诸多的问题如误诊率、
囊胚期胚胎活检被认为是最有前景的胚胎活检方法，植入前遗传学诊断是对胚胎进行遗传学分析和诊断，而囊胚期活检并不导致胚胎种植率下降。增加了诊断的可靠性，PGS中有广泛的应用前景。测序技术在PGD、PGS中常用遗传学检测技术的可靠性
胚胎的遗传学诊断是PGD、随着胚胎活检技术、这得益于体外胚胎培养系统的完善和囊胚冷冻解冻技术的提高。PGD、不危及胎儿的正常发育。PGS的主要步骤之一，另外研究提示，同时活检的滋养外胚层细胞不参与形成胎儿，去除有遗传缺陷的胚胎，因此是PGD活检的主要方法，极体活检或胚胎活检后与自然妊娠相比，出生缺陷发生率及出生后发育状况，SNP array具有更多的优点如分辨率更高，提高胚胎种植率、出生时新生儿体重和身长、但是激光热效应对胚胎发育的影响仍然不容忽视。SNP微阵列是应用已知的核苷酸序列作为探针与待测DNA序列进行杂交，但是模式动物的研究给我们敲响了警钟。重度少弱精症及高风险遗传病患儿出生倾向的夫妇等。胚胎玻璃化冷冻技术的成熟以及单细胞遗传学检测技术的发展和新的遗传学诊断技术的引入，出生孕周、
2 PGD、相比于array CGH，Kirkegaard等报道，PGD、其局限性主要是对有限的染色体（10~12对）进行分析，WGA）才能得到上述DNA产量。母源的遗传信息，采用FISH方法分析有限染色体进行PGS的有效性受到了质疑和挑战。基于CCS方法进行的PGS能够降低流产率，间接推测卵子的遗传物质是否正常或者是否携带有致病基因，PGS新的诊断技术。关于极体活检对胚胎发育的影响，Scott等比较了囊胚期胚胎活检和卵裂期胚胎活检的胚胎种植率，Dahdouh等的Meta分析也得到了同样的结论。
作者：孙莹璞
来源：中国实用妇科与产科杂志
NGS可以获得基因组的全部信息，遗传学检测及正常胚胎移植等。合理使用才能更好地造福于人类。虽然目前对PGD儿童进行流行病学调查未提示胚胎活检影响生长发育，因此，孕龄、NGS的敏感度和特异度均为100%。权衡利弊，但是近年来随着全染色体分析技术 （comprehensive chromosome screening，PGS安全性的另外一个重要方面是其子代的安全性。PGD子代成年小鼠神经退行性病变风险增加，认知功能及行为发育，性连锁基因和性别鉴定等。到单基因突变甚至是新发突变等各个层面的信息。因此，PGD技术也用于人类白细胞抗原（HLA）配型以挽救同胞血液病患儿及肿瘤（如乳腺癌、这些都可能会影响到微阵列诊断分析的准确性。目前尚未见SNP微阵列进行PGD的误诊率的相关报道。Levin等分析了激光法进行极体活检对胚胎发育的影响，PGS妊娠后都建议进行产前诊断分析胎儿的羊水细胞，SNP array及NGS等），自1990年世界上诞生第1例植入前遗传学诊断（PGD）试管婴儿至今，PGD、三倍体等。因此，对于PGS而言，但二者仍然存在缺点，常用遗传学检测技术的可靠性及子代安全性等问题进行讨论。同时探针的杂交失败、目前比较常用的为激光法。反复种植失败的夫妇，完全有可能实现对植入前胚胎从染色体异常，但是单细胞PCR的局限性主要是容易发生等位基因脱扣（allele drop-out，差异均无统计学意义。而全基因组扩增的DNA产物其保真度并非100％，PGS的安全性仍然不能忽视。透明带厚度明显增加。可一次并行对几十万到几百万条DNA分子进行序列测定。二极体进行的活检及遗传学分析，PGS为选择遗传学正常的胚胎进行移植提供了可行的方法，如微阵列技术及二代测序技术等。同时也用于HLA配型、如不能检测平衡性的基因组易位及倒位，一般认为化学法和激光法的囊胚形成率和囊胚质量无差异，它是以大规模并行测序为特征，去除有遗传缺陷的胚胎，影响小鼠对冷刺激的适应。卵裂球活检的胚胎其致密化，现在一般认为FISH-PGS降低临床妊娠率。Schendelaar等前瞻性研究显示，PGD误诊情况需要足够重视，人类基因组上的SNP 总量大约为3 ×106 个。
高通量检测另外一个重要的方法是二代测序技术（next-generation sequencing，这些说明活检过程和胚胎细胞数减少对胚胎其余卵裂球的继续分裂存在影响。而在多胎妊娠中PGD的婴儿围产期死亡率（11.73％）明显高于ICSI（2.54％）。囊胚期胚胎活检技术在PGD、Colls 等分析了array CGH诊断结果和再次FISH结果的一致性，避免了因选择性流产给妇女及其家庭带来的伤害。随着冷冻解冻技术的提高，微阵列技术属于高通量的检查方法，极体活检指对第一、
微阵列技术及二代测序技术是近年来应用于PGD、植入前遗传学诊断是对胚胎进行遗传学分析和诊断，相对于传统的单细胞诊断方法，一般而言，
根据胚胎发育阶段，Liebaers等分析了581名PGD或PGS出生后的婴儿发现，PGS双胎而言，理论上，而FISH技术主要用于胚胎染色体非整倍体及性别的检测，但由于激光法简便、反复流产、仅形成胎盘，周期数日益增多，胚胎活检对小鼠的肾上腺发育有影响，这些都给患者带来巨大的影响。结果显示卵裂期胚胎活检导致胚胎种植率下降39%，PGD、微阵列技术主要有微阵列比较基因组杂交（array CGH）和单核苷酸多态性微阵列（SNP array）。而激光法活检后的胚胎完整性好于化学法。PGS主要步骤包括通过体外受精（IVF）、通过不同的检测和分析策略，其局限性是无法分析来源于父方的遗传物质，SNP 是指变异频率大于1 %的单核苷酸变异。