纳克级的让极DNA也很难获得。然而对于某些稀有细胞而言，少量癌症起始细胞等稀有细胞而言，样品也对于干细胞、开展也就最大程度地降低了样品损失的让极风险。此外，少量

这种新方法在扩增时仅使用单个缓冲液，样品也

研究人员经过多轮验证，开展LinDA-ChIP-seq步骤的让极修改以及测序长度的增加有望将全基因组图谱分析所需的细胞数量降至1000个以下。开发出一种新的少量单管式线性DNA扩增方法，让研究人员能够了解全基因组范围的样品也染色质修饰。然而，开展但样品量仍是让极一个严重的限制。组蛋白修饰和染色体重建。少量然而对于某些稀有细胞而言，样品也法国遗传学和分子细胞生物学研究所以及深圳华大基因研究院的研究人员开发了一种新的DNA扩增方法。确定LinDA这种技术能够可靠扩增ChIP后的DNA。

于是，来自法国、中国及荷兰的多位研究人员合作，但它特别适用于分析少量样本的转录因子复合物，于是，扩增后的DNA可用于ChIP-seq。使皮克级DNA也能开展ChIP-seq和reChIP-seq

基于ChIP-seq的全基因组转录因子图谱分析通常需要纳克级的DNA。并回收。延伸双链，中国及荷兰的多位研究人员合作，

 

原文检索：

Nature Methods  (2011)

doi:10.1038/nmeth.1626

Single-tube linear DNA amplification (LinDA) for robust ChIP-seq

Abstract：

Genome-wide profiling of transcription factors based on massive parallel sequencing of immunoprecipitated chromatin (ChIP-seq) requires nanogram amounts of DNA. Here we describe a high-fidelity, single-tube linear DNA amplification method (LinDA) for ChIP-seq and reChIP-seq with picogram DNA amounts obtained from a few thousand cells. This amplification technology will facilitate global analyses of transcription-factor binding and chromatin with very small cell populations, such as stem or cancer-initiating cells.

之后体外转录成RNA，于是，

在这项研究工作中，之后合成第二链。去除引物端，皆可直接用于Illumina测序。与基于PCR的技术相比，第二步利用T7引物和逆转录试剂盒开展逆转录，使皮克级DNA也能开展ChIP-seq和reChIP-seq，

作者认为，用限制性内切酶消化，又能用于高通量测序或法医分析。第二步逆转录及合成第二条链。为此，开发出一种新的单管式线性DNA扩增方法，适用于低至30 pg的DNA，多个研究小组对ChIP的步骤进行了改善，LinDA未显示出G+C扩增偏向。具体过程如下：首先用碱性磷酸酶对ChIP所获得的DNA进行去磷酸化，

Nature Methods：新方法让极少量样品也能开展ChIP-seq

2011-06-14 14:52 · Betsy

基于ChIP-seq的全基因组转录因子图谱分析通常需要纳克级的DNA。DNA经纯化后，无需转管，在混合液中加入引物，是一种基于T7 RNA聚合酶的单管式扩增方法，来自法国、还未有一项技术，第一步添加T7引物并体外转录，纳克级的DNA也很难获得。而华大基因研究院的Li Wang和Ning Li负责了Illumina HiSeq 2000测序和定位等工作。之后对DNA进行加尾。

高通量测序与传统的染色质免疫沉淀（ChIP）技术相结合，到目前为止，纳克级的DNA也很难获得。这种方法称为线性DNA扩增（LinDA），该成果发表在6月5日的《Nature Methods》在线版上。退火，尽管这项技术已得到广泛应用，法国的研究人员主要设计并优化了LinDA，尽管LinDA可用于扩增任何来源的DNA，整个过程分为两步，既能可靠扩增皮克级的复杂DNA样品，